在疾病治療研究中，藥物需通過口服、注射等途徑遞送至體內以發揮療效。在基礎科研中，使用慢病毒、腺相關病毒（AAV）等工具病毒通過注射方式導入動物模型，是研究基因功能、代謝途徑及疾病機制的重要手段。選擇合適的體內注射策略對實驗結果的可靠性與重復性至關重要。下文將系統介紹常見注射途徑的操作步驟與注意事項，為實驗人員提供參考。

一、如何通過尾靜脈注射實現高效系統遞送？

尾靜脈注射是小鼠和大鼠系統中廣泛應用的給藥方式，適用于病毒載體、藥物或細胞的高效輸送。

操作步驟：

1.輕柔提取小鼠，置于鼠籠蓋或操作者手背進行安撫；

2.將動物裝入固定器，露出尾部，用酒精棉球擦拭或適度加熱（如溫水或燈照）以擴張血管；

3.拉直尾巴，識別尾靜脈位置；

4.于尾尖1/3處進針，若阻力小且進針順暢，提示針頭位于血管內；

5.回抽注射器，若有回血則可緩慢注射；

6.注射完畢后用棉球輕壓注射點約1分鐘以防出血；

7.將動物放回籠中觀察。

補充說明：

病毒注射量需嚴格按體重及實驗需求調整。例如6周齡大鼠（約150g）可注射AAV9，典型劑量為3×1013 – 1×101? v.g./kg，體積不超過200µl。

二、顳靜脈注射適用于新生小鼠嗎？

顳靜脈或面靜脈注射常用于新生小鼠，因其血管較為明顯且操作可視性好。

操作步驟：

1.將幼鼠置于濕冰上30–60秒實現輕度麻醉，注意避免過長時間導致并發癥；

2.準備注射器，吸入約30µl試劑（如伊文思藍）；

3.在顯微鏡下固定小鼠頭部，識別顳靜脈；

4.斜面向上進針，可見血液回流顯示成功進入血管；

5.緩慢推注，觀察血管是否發生漂白現象；

6.注射后留置針頭10–15秒，防止反流。

三、腹腔注射應注意哪些操作細節？

腹腔注射（IP）操作簡便、適用性廣，適合大體積藥液注射，但需注意避免損傷內臟。

操作步驟：

1.固定動物，使其腹部朝上，頭部略低；

2.選擇下腹部距離腹白線約0.5 cm處作為進針點；

3.以約30°角刺入腹腔，進針不宜超過1 cm；

4.回抽無血無體液后緩慢注射；

5.拔針時輕微旋轉以防漏液；

6.放回動物并持續觀察其狀態。

四、如何完成精準的視網膜下注射？

該技術適用于眼科疾病模型及基因治療研究，操作精度要求高，常需顯微手術設備輔助。

操作步驟：

1.麻醉動物并瞳孔擴張；

2.準備微量注射器（病毒液量1.5–2µl）；

3.開瞼并放置蓋玻片以清晰顯示視網膜；

4.于角膜緣后方穿孔，插入33 G鈍頭針；

5.緩慢注入病毒液，觀察視網膜下水泡形成；

6.輕柔退針并閉合眼瞼。

五、腦立體定位注射如何實現核團特異性遞送？

該法用于精準腦區注射，需依賴腦立體定位儀和腦圖譜坐標。

操作步驟：

1.麻醉動物并頭部固定于定位儀；

2.剃毛消毒后切開頭皮，暴露顱骨及前囟（Bregma）、后囟（Lambda）；

3.根據圖譜確定目標核團坐標，鉆孔開窗；

4.使用微量注射系統緩慢注入病毒；

5.注畢留針數分鐘，防止反流；

 6.縫合皮膚，復蘇動物并后續觀察。

六、其他常見注射方式有哪些？

還包括肌肉注射（IM）、皮下注射（SC）、皮內注射（ID）、灌胃（IG）及鞘內注射（IT）、脊神經注射等，各適用于不同研究目的：

• 肌肉注射：常用于疫苗或基因治療，多選擇股四頭肌或大腿外側肌群；

• 皮下注射：適用于緩釋制劑，注射時拉起皮膚形成“帳篷"結構；

• 皮內注射：用于免疫激發實驗，注射后可見明顯皮內水皰；

• 灌胃：用于口服給藥，需使用帶球狀頭部的灌胃針避免誤入氣道；

• 鞘內注射：適用于中樞神經系統藥物遞送，需準確識別椎間隙；

• 脊神經注射：用于周圍神經疾病模型，操作復雜度高，常需顯微分離技術。

結語

選擇合適的體內注射方式需綜合考慮研究目的、動物模型、試劑特性及操作可行性。嚴格執行操作規范、注重動物福利及倫理要求，是保證實驗科學性和結果可靠性的基礎。建議初次操作者在經驗豐富人員指導下進行，并積極利用視頻教程與實驗指南等資源提升操作一致性。

產品信息

杭州斯達特 志在為全球生命科學行業提供優質的抗體、蛋白、試劑盒等產品及研發服務。依托多個開發平臺：重組兔單抗、重組鼠單抗、快速鼠單抗、重組蛋白開發平臺（E.coli,CHO,HEK293,InsectCells）,已正式通過歐盟98/79/EC認證、ISO9001認證、ISO13485。

動物注射總失?。恳黄獛湍愀愣ㄋ须y題！